Beschreibung
Im Bereich der dynamischen Zellkultivierung ist ein natürlicher Blutfluss, wie er im menschlichen Körper vorkommt, wichtig und notwendig. Blutzellen werden bereits bei der Blutabnahme in eine veränderte Umgebung gezwungen, gefolgt vom Transport und insbesondere durch das Pumpen durch ein Analyseplättchen für die Live-Mikroskopie. Blutzellen verändern ihre charakteristische Expression bei zu hohen Druckgradienten und gravitativer Ablagerung. Hohe Scherkräfte verursacht durch Pumpsysteme können die Zellmembranen zerstören. Eine sanfte pulsierende Pumpe integriert auf einem Lab-on-Chip System ermöglicht den konstanten Kreislauf einer Zellsuspension, erlaubt die Kultivierung unter dynamischen Bedingungen und ermögliche die Analyse von Zell-Zell oder Zell-Material Interaktionen. Ferrofluidische Pumpsysteme sind limitiert durch das Leckwerden des dynamischen Verschlusses verursacht durch zu hohe Druckgradienten. Elektromagnetische Feldsimulationen können die Abdichtung zwischen Verschluss und Kanaloberfläche verbessern. Für einen geringen Zellschaden und eine hohe Durchflussrate wird der Partikelschaden Index (PDI) analysiert. Die Computerunterstützte Berechnung der Geschwindigkeit, die Scherspannungen und das optimale Design werden mit einem strukturierten und automatisierten Optimierungstool (HEEDS MDO) ermittelt. Die erhaltenen Designparameter ermöglichen die Umsetzung eines Prototypen zum sanften Zelltransport für die dynamische Zellanalyse. Hämolyse-Tests von Blut und Zytotoxizitäts-Tests von Zelllinien garantieren die Biokompatibilität der genannten Technologie. ** Diese Arbeit wird von der NÖ Forschungs- und Bildungsges.m.b.H. (NFB) im Rahmen des Life Science Call kofinanziert. Für den Inhalt dieser Publikation sind die Autoren verantwortlich.
Details
Projektzeitraum | 01.10.2014 - 31.03.2017 |
---|---|
Fördergeber | Bundesländer (inkl. deren Stiftungen und Einrichtungen) |
Förderprogramm | Life Science Call NFB |
Department | |
Projektverantwortung (Universität für Weiterbildung Krems) | Dipl.-Ing. Dr. Martin Brandl |
Publikationen
Gusenbauer, M.; Mazza, G.; Posnicek, T.; Brandl, M.; Schrefl, T. (2018). Magnetically actuated circular displacement micropump. The International Journal of Advanced Manufacturing Technology, 95: 3575/https://doi.org/10.1007/s00170-017-1440-5
Gusenbauer, M.; Schrefl, T. (2018). Simulation of magnetic particles in microfluidic channels. Journal of Magnetism and Magnetic Materials, Volume 446: 185-191
Gusenbauer, M.; Tothova, R.; Mazza, G.; Brandl, M.; Schrefl, T.; Jancigova, I.; Cimrak, I. (2018). Cell Damage Index as Computational Indicator for Blood Cell Activation and Damage. Artificial Organs, Volume 42, Issue 7: 746-755
Gusenbauer, M.; Mazza, G.; Brandl, M.; Schrefl, T. (2017). Sensing the blood cell damage in a magnetically actuated circular pump. IEEE, 2017 IEEE Sensors: 1-3
Gusenbauer, M.; Mazza, G.; Brandl, M.; Schrefl, T.; Tothova, R.; Jancigova, I.; Cimrak, I. (2016). Sensing platform for computational and experimental analysis of blood cell mechanical stress and activation in microfluidics. Procedia Engineering, 168: 1390–1393
Vorträge
Sensing the blood cell damage in a magnetically actuated circular pump
IEEE Sensors 2017, 01.11.2017
Model-Based Design and Optimization of Microfluidic Systems for Gentle Cellular Perfusion
Sensor2017 Nürnberg, 31.05.2017
Keep the blood cells happy
2nd Workshop on Modelling of Biological Cells, Fluid Flow and Microfluidics, Vrátna, Slovakia, 06.02.2017
Rapid prototyping of miniature blood vessels
2nd Workshop on Modelling of Biological Cells, Fluid Flow and Microfluidics, Vrátna, Slovakia, 06.02.2017
Cell rheology in microfluidic perfusion: computational and experimental approach
MNE 2016, 21.09.2016
Simulation of magnetic particles in blood flow to improve failsafe particle detection of microspheres based detoxification system
Particles 2015, 28.09.2015
Automated microfluidic optimization to reduce blood cell activation
CFD in Medicine and Biology II, 01.09.2015